Triagem não
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Triagem não

Apr 21, 2024

Nature Communications volume 14, número do artigo: 5294 (2023) Citar este artigo

Detalhes das métricas

Saccharomyces cerevisiae é um carro-chefe da biotecnologia industrial devido à proeminência do organismo na fermentação alcoólica e ao conjunto de ferramentas genéticas sofisticadas disponíveis para manipular seu metabolismo. No entanto, S. cerevisiae não é adequado para produzir em excesso muitos bioprodutos a granel, uma vez que a toxicidade restringe a produção em títulos elevados. Aqui, empregamos um ensaio de alto rendimento para rastrear 108 cepas de levedura acessíveis ao público quanto à tolerância a 20 g L-1 de ácido adípico (AA), um precursor de náilon. Identificamos 15 leveduras tolerantes e selecionamos Pichia occidentalis para produção de ácido cis, cis-mucônico (CCM), precursor do AA. Ao desenvolver um kit de ferramentas de edição de genoma para P. occidentalis, demonstramos a produção em lote alimentado de CCM com título máximo (38,8 g L-1), rendimento (0,134 g g-1 de glicose) e produtividade (0,511 g L-1 h-1 ) que supera todas as métricas alcançadas com S. cerevisiae. Este trabalho nos aproxima da bioprodução industrial de AA e ressalta a importância da seleção de hospedeiros no bioprocessamento.

Historicamente, a levedura de cerveja (Saccharomyces cerevisiae) tem sido o hospedeiro microbiano preferido para a superprodução de combustíveis, produtos químicos e farmacêuticos. No entanto, devido ao baixo valor de muitos produtos químicos e biocombustíveis a granel, as concentrações necessárias para a produção em escala comercial são frequentemente tóxicas para S. cerevisiae e outros organismos modelo. Por exemplo, S. cerevisiae é incapaz de sustentar o crescimento em concentrações baixas a moderadas de butanol (2%)1, vanilina (0,05%)2, benzaldeído (0,1–0,2%)3 e muitos ácidos orgânicos (0,25–2,5%) 4,5,6. Os ácidos orgânicos representam um desafio distinto de bioprocessamento, já que um bioprocesso de ácido orgânico ideal seria realizado em pH ácido, o que simplifica a recuperação a jusante da forma não dissociada e contorna a exigência de manutenção do pH durante a fermentação. No entanto, a toxicidade ácida é inversamente proporcional ao pH, uma vez que os ácidos não dissociados (pH pKa8,9,10.

O ácido adípico é um ácido dicarboxílico C6 utilizado na produção de náilon 6,6. Com uma produção anual de três milhões de toneladas e um mercado global de seis mil milhões de dólares11, o ácido adípico foi classificado como uma “supermercadoria” pelo Departamento de Energia dos EUA12. A procura global de ácido adípico é actualmente satisfeita através de um processo químico que envolve ciclohexano e ácido nítrico, mas este método utiliza recursos petroquímicos e liberta óxido nitroso, um potente gás com efeito de estufa, o que leva à investigação de rotas mais sustentáveis ​​para a sua produção. Não existem rotas naturais para a biossíntese do ácido adípico, mas pelo menos oito vias bioquímicas projetadas foram propostas para a sua bioprodução . Destas vias, grande progresso foi alcançado utilizando a rota do ácido cis, cis-mucônico (CCM). Esta estratégia emprega três enzimas heterólogas, 3-desidroshiquimato desidratase, descarboxilase do ácido protocatecuico e catecol dioxigenase, para a síntese de CCM a partir do 3-desidroshiquimato, um intermediário da via do chiquimato. O CCM é convertido em ácido adípico por meio de hidrogenação pelas enzimas enoato redutase, mas as variantes bacterianas caracterizadas até o momento funcionam mal em hospedeiros de levedura13, alcançando <0,9% de conversão molar de CCM em ácido adípico14. Na ausência de uma enoato redutase ativa em levedura adequada, S. cerevisiae foi projetada para sintetizar CCM com um título, rendimento e produtividade de até 22,5 g L-1, 0,1 g g-1 de glicose e 0,21 g L-1 h−1, respectivamente9,10. Apesar desses avanços, os processos de CCM de levedura são realizados em pH 5–6, que está bem acima do pKa do CCM (3,87) e mantém o ácido em sua forma dissociada para limitar a toxicidade do produto.

Em resposta à baixa tolerância de S. cerevisiae a muitos bioprodutos a granel, o foco mudou para a triagem de espécies de leveduras não convencionais quanto a fenótipos mais adequados para aplicações industriais . A seleção de cepas é um aspecto crítico e muitas vezes esquecido do desenvolvimento de bioprocessos, pois a seleção de um hospedeiro microbiano adaptado ao produto final alvo provavelmente reduzirá as intervenções de engenharia de cepas, simplificará a separação a jusante, limitará a toxicidade do produto e melhorará as métricas gerais do processo16. Por exemplo, Yarrowia lipolytica é um hospedeiro oleaginoso e osmotolerante que é adequado para a produção de ácidos graxos e alcanos17, Kluyveromyces marxianus é uma levedura termotolerante de rápido crescimento18 e Pichia kudriavzevii é um hospedeiro robusto tolerante a ácidos utilizado para a produção de diversos ácidos orgânicos19. Aproximadamente 1.500 espécies de leveduras foram classificadas em mais de 100 gêneros e os repositórios públicos de culturas contêm milhares de cepas distintas de leveduras. A maioria destas espécies de leveduras pode ser cultivada em laboratório com meios padrão20 e grandes avanços na sequenciação do genoma, biologia de sistemas e engenharia de estirpes reduziram drasticamente o custo e o trabalho envolvido na domesticação genética de hospedeiros não convencionais. Kits de ferramentas genéticas sofisticados foram desenvolvidos para diversas espécies de leveduras, incluindo Y. lipolytica21, K. marxianus18 e P. pastoris22, proporcionando novas oportunidades para seleção de hospedeiros além de Saccharomyces.

1.0 in the allotted time in the absence of acid inhibitors./p>1.5 kb) were selected as loci for DNA integration in P. occidentalis. P. occidentalis promoters (0.6–1.5 kb) were identified by selecting the full sequence flanked by the target and upstream coding sequences. P. occidentalis terminators (0.3–1.2 kb) were identified by selecting the full sequence flanked by the target and downstream coding sequences. Pichia expression cassettes are provided in Table 5. Sequences of P. occidentalis promoters and terminators, and integration loci are provided in Supplementary Data 3 and 4, respectively. Genes and synthetic DNAs are provided in Supplementary Data 5./p>